Antimicrobial and antioxidant activity of the leaves and flowers of Tabebuia aurea and Cordia glabrata

Autores

  • E. C. Tomazeli Universidade Federal de Mato Grosso
  • D. M. S. Valladão Universidade Federal de Mato Grosso
  • C. R. Andrighetti Universidade Federal de Mato Grosso
  • M. Magalhães Universidade Federal de Mato Grosso
  • L. D. Battirola Universidade Federal de Mato Grosso
  • C. Bonacorsi Universidade Federal de Mato Grosso

DOI:

https://doi.org/10.36560/1352020918

Palavras-chave:

Tabebuia aurea, Cordia glabrata, extracts, antimicrobial, antioxidant

Resumo

The search for new compounds of plant origin with antimicrobial activity has been the goal of many research groups, due to the increase in the number of microorganisms resistant to antimicrobials. The objective of this study was to evaluate the antimicrobial and antioxidant activity of two plant species, Tabebuia aurea (“paratudo”) and Cordia glabrata (“louro branco”), present in the state of Mato Grosso. The plant material (leaves and flowers) was extracted by maceration in 70% ethanol (Et) and polar hexane (Hex) (non-polar solvent). The determination of the antimicrobial activity was carried out by broth microdilution technique, and the antioxidant potential determined by the DPPH free radical method. In the evaluation of the antibacterial activity, the ethanolic extract of C. glabrata leaves presented better antibacterial potential for Staphylococcus aureus, revealing a minimum inhibitory concentration (MIC) of 125 μg / mL. However, for strains of Escherichia coliPseudomonas aeruginosa and Salmonella typhimurium, all extracts of C. glabrata showed MICs of 2000 μg / mL or higher. The ethanolic and hexanic extracts of T. aurea flowers and leaves did not show promising antibacterial potential for any of the tested strains. In the evaluation of antifungal activity against Candida albicans and Candida parapsilosis, the hexanic extract of C. glabrata leaves presented weak to moderate activity only for the C. albicans strain (MIC = 1000 μg / mL). The remaining extracts of C. glabrata and the extracts of T. aurea were not promising against the tested yeasts, showing inhibitory concentrations equal to or greater than 2000 μg / mL. In the determination of the antioxidant potential, the polar extracts (Et 70%) had a higher capacity to sequester the DPPH radical than the capacity obtained for the apolar extracts (Hex). The tests revealed promising antibacterial activity for Staphylococcus aureus and high antioxidant potential of the hydroethanolic extracts of leaves and flowers of C. glabrata, respectively.


Biografia do Autor

E. C. Tomazeli, Universidade Federal de Mato Grosso

Instituto de Ciências da Saúde - Microbiologia.

D. M. S. Valladão, Universidade Federal de Mato Grosso

Instituto de Ciências da Saúde - Química Analítica.

C. R. Andrighetti, Universidade Federal de Mato Grosso

Instituto de Ciências da Saúde - Farmacognosia.

M. Magalhães, Universidade Federal de Mato Grosso

Instituto de Ciências da Saúde - Microbiologia.

L. D. Battirola, Universidade Federal de Mato Grosso

Instituto de Ciências Naturais, Humanas e Sociais - Ecologia.

C. Bonacorsi, Universidade Federal de Mato Grosso

Instituto de Ciências da Saúde - Microbiologia.

Referências

AGRA, M. F.; DE FREITAS, P. F.; BARBOSA-FILHO, J. M. Synopsis of the plants known as medicinal and poisonous in Northeast of Brazil. Revista Brasileira de Farmacognosia 17: 114-140, 2007. DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-695X2007000100021

AUGUSTO, A. C.; MIGUEL, F.; MENDONÇA, S.; PEDRAZZOLI JUNIOR, J.; GURGUEIRA, S. A. Oxidative stress expression status associated to Helicobacter pylori virulence in gastric diseases. Clinical Biochemistry 40: 615-622, 2007. DOI: https://doi.org/10.1016/j.clinbiochem.2007.03.014

ALVES, E. F., SANTOS, B. S., MATIAS, E. F. F. Avaliação da atividade antibacteriana e modulatória da fração hexânica do extrato hexânico de Cordia verbenacea DC. Revista Interfaces: Saúde, Humanas e Tecnologia, v. 2, n. 5, 2014. http://dx.doi.org/10.16891/2317.434X.96. DOI: https://doi.org/10.16891/2317.434X.96

.

ASKARI, G. A.; KAHOUADJI, A.; KHEDID, K.; MOUSADDAK, M.; OUAFFAK, L.; CHAROF, R.; MENNANE, Z. Evaluation of Antimicrobial Activity of Aqueous and Ethanolic Extracts of Leaves of Vitis vinifera Collected from Different Regions in Morocco. American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences 12: 85-90, 2012.

AZEVEDO, L. F. P.; FARIA, T. S. A.; PESSANHA, F. F.; ARAUJO, M. F.; LEMOS, G. C. S. Triagem fitoquímica e atividade antioxidante de Costus spicatus (Jacq.) S.w. Revista Brasileira de Plantas Medicinais 16: 209-215, 2014. DOI: https://doi.org/10.1590/S1516-05722014000200007

BUSSMANN, R.W.; MALCA-GARCÍA, G.; GLENN, A.; SHARON, D.; CHAIT, G.; DÍAZ, D.; POURMAND, K.; JONAT, B.; SOMOGY, S.; GUARDADO, G.; AGUIRRE, C.; CHAN, R.; MEYER, K.; KUHLMAN, A.; TOWNESMITH, A.; EFFIO-CARBAJAL, J.; FRÍAS-FERNANDEZ, F.; BENITO, M. Minimum inhibitory concentrations of medicinal plants used in Northern Peru as antibacterial remedies. Journal of Ethnopharmacology 132:101–108, 2010. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2010.07.048

BUTCHER, L. D.; DEN HARTOG, G.; ERNST, P. B.; CROWE, S. E. Oxidative stress resulting from Helicobacter pylori infection contributes to gastric carcinogenesis. Cellular and Molecular Gastroenterology and Hepatology 3: 316-322, 2017. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jcmgh.2017.02.002

CHANDRA, H.; BISHNOI, P.; YADAV, A.; PATNI, B.; MISHRA, A. P.; NAUTIYAL, A. R. Antimicrobial Resistance and the Alternative Resources with Special Emphasis on Plant-Based Antimicrobials. A Review Plants 6: 1-11, 2017. DOI: https://doi.org/10.3390/plants6020016

CHAVASCO, J. M.; PRADO E FELIPHE, B. H. M.; CERDEIRA, C. D.; LEANDRO, F. D.; COELHO, L. F. L.; DA SILVA, J. J.; CHAVASCO, J. K.; DIAS, A. L. T. Evaluation of antimicrobial and cytotoxic activities of plant extracts from southern Minas Gerais cerrado. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo 56: 13-20, 2014. DOI: https://doi.org/10.1590/S0036-46652014000100002

CHENG, Z.; MOORE, J.; YU, L. High-throughput relative DPPH radical scavenging capacity assay. Journal Agricultural and Food Chemistry 54: 7429-7436, 2006. DOI: https://doi.org/10.1021/jf0611668

COMPEAN, K. L.; YNALVEZ, R. A. Antimicrobial Activity of Plant Secondary Metabolites: A Review. Research Journal of Medicinal Plants 8: 204-213, 2014. DOI: https://doi.org/10.3923/rjmp.2014.204.213

COSTA, L. P. S.; DE ARAÚJO, M. R. S.; CHAVES, M. H. Documentação química e farmacológica da espécie Tabebuia aurea. In: 37a Reunião Anual da Sociedade Brasileira de Química, Natal – RN, 2014.

CLSI - CLINICAL AND LABORATORY STANDARDS INSTITUTE. Reference method for broth dilution antifungal susceptibility testing of yeasts. Approved standard, 3th ed. CLSI document M27-A3. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute, 2008.

CLSI - CLINICAL AND LABORATORY STANDARDS INSTITUTE. Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically. Approved standard, 9th ed. CLSI document M7-A9. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute, 2012.

CORREIA, A. F.; SEGOVIA, J. F.; GONCALVES, M. C.; DE OLIVEIRA, V. L.; SILVEIRA, D.; CARVALHO, J. C.; KANZAKI, L. I. Amazonian plant crude extract screening for activity against multidrug-resistant bacteria. European Review for medical and Pharmacological Sciences 12: 369-380, 2008.

DEGÁSPARI, C. H.; WASZCZYNSKYJ, N. Propriedades antioxidantes de compostos fenólicos. Visão Acadêmica 5: 33-40, 2004. DOI: https://doi.org/10.5380/acd.v5i1.540

DE FARIA, M.J. M.; BRAGA, C. A. S. B.; DE PAULA, J. R.; DANTAS, M. C.; ANDRÉ, P. B.; VAZ, B. G.; DE CARVALHO, T. C.;ROMÃO, W.; da COSTA, W. B.; da CONCEIÇÃO, E. C. Atividade antimicrobiana de Copaifera spp. frente às bactérias isoladas de leite de vacas com mastite. Ciência Animal Brasileira 18: 1-14, 2017.

DE MENEZES, J. E. S. A.; LEMOS, T. L. G.; PESSOA, O. D. L.; BRAZ-FILHO, R.;MONTENEGRO, R. C.; WILKE, D. V.; COSTA-LOTUFO, L. V.; PESSOA, C.; DE MORAES, M. O.; SILVEIRA, E. R. A. Cytotoxic meroterpenoid benzoquinone from roots of Cordia globosa. Planta Medica 71: 54-58, 2005. DOI: https://doi.org/10.1055/s-2005-837751

DE OLIVEIRA, A. K.M; DE GUALTIERI, S. C. J. Crescimento inicial de Tabebuia aurea sob três intensidades luminosas em solo arenoso. Floresta (Curitiba) 42: 475 - 484, 2012. DOI: https://doi.org/10.5380/rf.v42i3.24184

DE OLIVEIRA, K. R.; OLIVEIRA, Y. C. M.; NAVES, P. L. F.; LEMES, G. F. Estudo da atividade antimicrobiana das folhas de Cayaponia citrullifolia (Griseb.) Cogn. (Cucurbitaceae). In: IV Congresso de Ensino, Pesquisa e Extensão UEG, Pirenópolis, 2017.

DE PINHO, L.; SOUZA, P. N. S.; SOBRINHO, E. M.; De ALMEIDA, A. C.; ARTINS, E. R. Atividade antimicrobiana de extratos hidroalcoolicos das folhas de alecrim- imenta, aroeira, barbatimão, erva baleeira e do farelo da casca de pequi. Ciência Rural 42: 326-331, 2012. DOI: https://doi.org/10.1590/S0103-84782012005000003

DE SOUZA, C. D.; FELFILI, J. M. Uso de plantas medicinais na região de Alto Paraíso de Goiás, GO, Brasil. Acta Botanica Brasilica 20: 135-142, 2006. DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-33062006000100013

DOLAB, J. G.; LIMA, B.; SPACZYNSKA, E.; KOS, J.; CANO, N. H.; FERESIN, G.; TAPIA, A.; GARIBOTTO, F.; PETENATTI, E.; OLIVELLA, M.; MUSIOL, R.; JAMPILEK, J.; ENRIZ, R. D. The Antimicrobial Activity of Annona emarginata (Schltdl.) H. Rainer and Most Active Isolated Compounds against Clinically Important Bacter. Molecules 23: 1-14, 2018. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules23051187

DOS SANTOS, R. F. E. P. Avaliação do potencial biológico de Tabebuia aurea (Silva Manso) Benth. & Hook. f. ex. S. Moore. Dissertação (Mestrado em Enfermagem) – Escola de Enfermagem e Farmácia da Universidade Federal de Alagoas, Maceió, 2014.

DUARTE, M. G. R.; SOARES, I. A. A.; BRANDÃO, M.; JÁCOME, R. L. R. P.; FERREIRA, M. D.; DA SILVA, C. R. F.; DE OLIVEIRA, A. B. Perfil fitoquímico e atividade antibacteriana in vitro de plantas invasoras. Revista Lecta (Bragança Paulista) 20: 177-182, 2002.

FENGLIN, H.; RUILI, L.; BAO, H.; LIANG, M. Free radical scavenging activity of extracts prepared from fresh leaves of selected Chinese medicinal plants. Fitoterapia 75: 14-23, 2004. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fitote.2003.07.003

FORSYTHE, S. J. Microbiologia da segurança alimentar. 2. ed. Porto Alegre, Artmed, 2013.

FUKUDA, T.; HIDEYUKI, I.; YOSHIDA, T. Antioxidative polyphenols from walnuts (Juglans regia L.). Phytochemistry 63: 795-801, 2003. DOI: https://doi.org/10.1016/S0031-9422(03)00333-9

GASPARI, S. Estudo das atividades antioxidante e mutagênica/antimutagênica induzidas pelo extrato vegetal da Costus spicatus. 79 p. Dissertação (Mestrado em Diagnóstico Genético e Molecular) – Universidade Luterana do Brasil, Canoas, 2005.

GOBBO-NETO, L; LOPES, N.P.L. Plantas Medicinais: fatores de influência no conteúdo de metabolismo secundários. Química Nova 30: 375-381, 2007. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-40422007000200026

GUARIM NETO, G. O saber tradicional pantaneiro: as plantas medicinais e a educação ambiental. Revista Eletrônica do Mestrado em Educação Ambiental 17: 71-89, 2006. https://periodicos.furg.br/remea/article/view/3025.

GUARIM NETO, G. Plantas do Brasil – angiospermas do estado de Mato Grosso - Pantanal. Acta Botanica Brasilica 5: 25-47, 1991. DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-33061991000100003

GUARIM NETO, G.; DE MORAIS, R. G. Recursos medicinais de espécies do cerrado de Mato Grosso: um estudo bibliográfico. Acta Botanica Brasilica 17: 561-584, 2003. DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-33062003000400009

HOLETZ, F. B.; PESSINI, G. L.; SANCHES, N. R.; CORTEZ, D. A.; NAKAMURA, C. V.; DIAS FILHO, B. P. Screeningof some plants used in the brazilian folk medicine for the treatment of infectious diseases. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz 97: 1027-1031, 2002. DOI: https://doi.org/10.1590/S0074-02762002000700017

JAMKHANDE, P. G..; BARDE, S. R.; PATWEKAR, S. L.; TIDKE, P. S. Plant profile, phytochemistry and pharmacology of Cordia dichotoma (Indian cherry): A review. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine 3: 1009-1012, 2013. DOI: https://doi.org/10.1016/S2221-1691(13)60194-X

KHAN, S.; IMRAN, M.; IMRAN, M.; PINDARI, N. Antimicrobial activity of various ethanolic plant extracts against pathogenic multi drug resistant Candida spp. Bioinformation 13: 67-72, 2017. DOI: https://doi.org/10.6026/97320630013067

LORENZI, H. Árvores brasileiras: manual de identificação e cultivo de plantas arbóreas nativas do Brasil. 5 ed. Nova Odessa: Instituto Plantarum, 2008.

MAGALHÃES, L. M.; SEGUNDO, M. A.; REIS, S.; LIMA, J. L. Methodological aspects about in vitro evaluation of antioxidant properties. Analytica Chimica Acta 613: 1-19, 2008. DOI: https://doi.org/10.1016/j.aca.2008.02.047

MARINOVA, G.; BATCHVAROV, V. Evaluation of the methods for determination of the free radical scavenging activity by DPPH. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 17: 11-24, 2011.

MATIAS, E. F. F.; ALVES, E. F.; SILVA, M. K. N.; CARVALHO, V. R. A.; MELO COUTINHO, H. D. M.; DA COSTA, J. G. M. The genus Cordia: botanists, ethno, chemical and pharmacological aspects. Revista Brasileira de Farmacognosia 25: 542-552, 2015. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bjp.2015.05.012

MIRANDA, J. A. L.; ROCHA, J. A.; ARAÚJO, K. M.; QUELEMES, P. V.; MAYO, S. J.; ANDRADE, I. M. Atividade antibacteriana de extratos de folhas de Montrichardia linifera (Arruda) Schott (Araceae). Revista Brasileira de Plantas Medicinais 17: 1142-1149, 2015. DOI: https://doi.org/10.1590/1983-084x/14_169

MIRANDA, G. S.; SANTANA, G. S.; MACHADO B. B.; COELHO, F. P.; CARVALHO, C.A. Atividade antibacteriana in vitro de quatro espécies vegetais em diferentes graduações alcoólicas. Revista Brasileira de Plantas Medicinais 15: 104-111, 2013. DOI: https://doi.org/10.1590/S1516-05722013000100015

MOREIRA, R. C. R; REBÊLO, J. M. M; GAMA, M. E. A; COSTA, J. M. L. Nível de conhecimento sobre Leishmaniose Tegumentar Americana (LTA) e o uso de terapias alternativas por populações de uma área endêmica da Amazônia do Maranhão, Brasil, Cadernos de Saúde Pública 18: 187-195, 2002. DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-311X2002000100019

MOULIN, J. C.; RODRIGUES, B. P.; OLIVEIRA, J. T. S., ROSA, R. A. Propriedades tecnológicas do lenho de louro-preto. Pesquisa Florestal Brasileira 36: 415-421, 2016. DOI: https://doi.org/10.4336/2016.pfb.36.88.994

OLIVEIRA, V. B.; ZUCHETTO, M.; OLIVEIRA, C. F.; PAULA, C. S.; DUARTE, A. F. S.; MIGUEL, M. D.; MIGUEL, O. G. Efeito de diferentes técnicas extrativas no rendimento, atividade antioxidante, doseamentos totais e no perfil por clae-dad de Dicksonia sellowiana (presl.). Hook, dicksoniaceae. Revista Brasileira de Plantas Medicinais 18: 230-239, 2016. DOI: https://doi.org/10.1590/1983-084X/15_106

PATRA, J. K.; KIM, E. S.; KYOUNGHEE, O.; HYEON-JEONG, K.; KIM, Y.; KWANG-HYUN, B. Antibacterial effect of crude extract and metabolites of Phytolacca american n athogens responsible for periondontal inflamatoty diseases and dental caries. BMC Complementary and Alternative Medicine 14: 1-6, 2014. DOI: https://doi.org/10.1186/1472-6882-14-343

POHANKA, M. Role of oxidative stress in infectious diseases. A review. Folia Microbiologica (Praha) 58: 503-513, 2013. DOI: https://doi.org/10.1007/s12223-013-0239-5

PRADO, M. S. A.; BRITO, H. O.; NORONHA E. P.; FRANCA, L. M.; BRITO, L. M. O. Phytochemical analysis composition from Annona squamosa (ATA) ethanolic extract leaves. Revista Brasileira de Farmácia 89: 180-184, 2008.

PYNAM, H.; DHARMESH, S. M. Antioxidant and anti-inflammatory properties of marmelosin from Bael (Aegle marmelos L.); Inhibition of TNF-α mediated inflammatory/tumor markers. Biomedicine & Pharmacotherapy 106: 98-108, 2018. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biopha.2018.06.053

RADULOVI, N. S.; BLAGOJEVI, P. D.; STOJANOVI-RADI, Z. Z.; STOJANOVI, N. M. Antimicrobial Plant Metabolites: Structural Diversity and Mechanism of Action. Current Medicinal Chemistry 20: 932-952, 2013. DOI: https://doi.org/10.2174/092986713805219136

RAHMAN. H.; KHAN, I.; HUSSAIN, A.; SHAHAT, A. A.; TAWAB, A.; QASIM, M.; ADNAN, M.; AL-SAID, M. S.; ULLAH, R.; KHAN, S. N. Glycyrrhiza glabra HPLC fractions: identification of Aldehydo Isoophiopogonone and Liquirtigenin having activity against multidrug resistant bacteria. BMC Complementary and Alternative Medicine 18: 1-6, 2018. DOI: https://doi.org/10.1186/s12906-018-2207-8

RAHMAN, M. A.; AKHTAR, J. A. New linoleiyl arabinopyranoside from the bark of Bauhinia racemosa Lam and a new flavonoidal glycoside from the leaves of Cordia dichotoma Linn. Natural Product Reserach, v.30, n. 20, 2016. DOI: https://doi.org/10.1080/14786419.2016.1163694

REIS, F. P.; SENNA BONFA, I. M.; CAVALCANTE, R. B.; OKOBA, D.; DE SOUZA VASCONCELOS, S. B.; CANDELORO, L., DE OLIVEIRA FILIU, W. F.; DUENHAS MONREAL, A. C., DA SILVA, V. J., SANTA RITA, P. H.; CAROLLO, C. A.; TOFFOLI-KADRI, M. C. Tabebuia aurea decreases inflammatory, myotoxic and hemorrhagic activities induced by the venom of Bothrops neuwiedi. Journal of Ethnopharmacology 158: 352–357, 2014. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2014.10.045

REYNERTSON, K. A.; BASILE, M. J.; KENNELLY, E. J. Antioxidant potential of seven Myrtaceous fruits. Ethnobotany Research & Applications 3: 25-36, 2005. DOI: https://doi.org/10.17348/era.3.0.25-36

RIBEIRO, D. A.; MACÊDO, D. G.; OLIVEIRA, L. G. S.; SARAIVA, M. E.; OLIVEIRA, S. F.; SOUZA, M. M. A.; MENEZES, I. R. A. Potencial terapêutico e uso de plantas medicinais em uma área de Caatinga no estado do Ceará, nordeste do Brasil. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, Campinas 16: 912-930, 2014. DOI: https://doi.org/10.1590/1983-084X/13_059

SANTOS, K. F. R.; OLIVEIRA, T. T.; NAGEM, T. J.; PINTO, A. S.; OLIVEIRA, M. G. A. Hypolipidaemic effects of neringenin, rutin, nicotinic acid and their associations. Pharmacology Research 40: 493-496, 1999. DOI: https://doi.org/10.1006/phrs.1999.0556

SANTOS, R. F. E. P.; CONSERVA, L. M.; BASTOS, M. L. A. CAMPESATTO, E. A. Avaliação do potencial biológico da Tabebuia aurea (Silva Manso) como fonte de moléculas bioativas para atividade antimicrobiana, antiedematogênica e antirradicalar. Revista Brasileira de Plantas Medicinais 17: 1159-1168, 2015. DOI: https://doi.org/10.1590/1983-084x/14_168

SAVOIA, D. Plant-derived antimicrobial compounds: alternatives to antibiotics. Future Microbiology 7: 979–990, 2012. DOI: https://doi.org/10.2217/fmb.12.68

SETTHARAKSA, S.; MADAKA, F.; SUEREE, L.; KITTIWISUT, S.; SAKUNPAK, A.; MOTON, C.; CHAROENCHAI, L. Effect of solvent types on phenolic, flavonoid contents and antioxidant activities of Syzygium gratum (Wight) S. N. International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences 6: 114-116, 2014.

SOARES, J. J.; DE OLIVEIRA, A. K. M. O paratudal do pantanal de Miranda, Corumbá-MS, Brasil. Revista Árvore 33: 339-347, 2009. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-67622009000200015

SILVA, C. A. M. Contribuição ao estudo químico e biológico de Pouteria gardinerii (Mart. & Miq.) Baehni (Sapotaceae). 197f. Dissertação (Mestrado em Ciências da Saúde) - Faculdade de Ciências da Saúde, Universidade de Brasília, Brasília, 2007.

SILVEIRA, G. P.; NOME, F.; GESSER, J. C.; SÁ, M. M. Estratégias utilizadas no combate a resistência bacteriana. Química Nova 29:844-855, 2006. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-40422006000400037

SIMONETTI, E.; ETHUR, M.E.; CASTRO, L.C.; KAUFFMANN, C.; GIACOMIN, A.C.; LEDUR, A.; AROSSI, K.; PACHECO, L.A.; GOETTERT, M.I.; FALEIRO, D.; FREITAS, E.M. Avaliação da atividade antimicrobiana de extratos de Eugenia anomala e Psidium salutare (Myrtaceae) frente DOI: https://doi.org/10.1590/1983-084X/15_005

TORTORA, G. J.; FUNKE, B. R.; CASE, C. L. Microbiologia. 10. ed. Porto Alegre: Artmed, 2012.

TROMBETTA, D.; CASTELLI, F.; SARPIETRO, M. G.; VENUTI, V.; CRISTANI, M.; DANIELE, C.; SAIJA, A.; MAZZANTI, G.; BISIGNANO, G. Mechanisms of Antibacterial Action of Three Monoterpenes. Antimicrob Agents Chemotherapy 49: 2474–2478, 2005. DOI: https://doi.org/10.1128/AAC.49.6.2474-2478.2005

VÃSQUEZ, S. P. F.; DE MENDONÇA, M. S.; NODA, S. N. Etnobotânica de plantas medicinais em comunidades ribeirinhas do Município de Manacapuru, Amazonas, Brasil. Acta Amazonica 44: 457-472, 2014. DOI: https://doi.org/10.1590/1809-4392201400423

VIRIATO, A. Terpenoides com atividade antifúngica para Candida Berkhout, causadoras de infecções hospitalares. O Mundo da Saúde (São Paulo) 38: 40-50, 2014. DOI: https://doi.org/10.15343/0104-7809.20143801040050

XIE, Y.; YANG, W.; TANG F.; CHEN, X.; REN, L. Antibacterial activities of flavonoids: structure-activity relationship and mechanism. Current Medicinal Chemistry 22: 132-149, 2015. DOI: https://doi.org/10.2174/0929867321666140916113443

YASUNAKA, D. S.; SCHLEDER, E. J. D.; DOURADO, DOROTY, M.; DE MACEDO, C. S. MATIA, R. Caracterização química do extrato hexânico das folhas de Anacardium humile (Campo Grande – MS) em duas épocas diferentes, estudo da atividade antimicrobiana. In: 1º Seminário Interno de Iniciação Científica da Universidade Anhanguera-Uniderp, Campo Grande, 2008.

WAGNER, H.; BLADT, S. Plant drug analysis – a thin layer chromatography atlas. 2º Edição, Berlin, 1995. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-642-00574-9

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Publicado

2020-04-29

Como Citar

Tomazeli, E. C., Valladão, D. M. S., Andrighetti, C. R., Magalhães, M., Battirola, L. D., & Bonacorsi, C. (2020). Antimicrobial and antioxidant activity of the leaves and flowers of Tabebuia aurea and Cordia glabrata. Scientific Electronic Archives, 13(5), 59–68. https://doi.org/10.36560/1352020918

Edição

Seção

Ciências Biológicas

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